Kit enzimático para la determinación cuantitativa de amoniaco en plasma mediante espectrofotometría UV a 340 nm. Ofrece alta linealidad hasta 1180 μmol/L y excelente precisión con coeficientes de variación inferiores al 7%. Su formato flexible incluye reactivos listos para uso y opciones de reconstitución para analizadores automáticos. Ideal para el diagnóstico de hiperamonemia y el monitoreo de la función hepática y renal.
Determinación cuantitativa de Amoniaco. IVD. Conservar a 2-8ºC.
USO PREVISTO
Para determinación cuantitativa in vitro de Amoniaco en plasma.
PRINCIPIO DEL MÉTODO
El amoniaco se combina con α-cetoglutarato y NADPH en presencia de glutamato deshidrogenasa (GLDH) para producir glutamato y NADP+. El correspondiente descenso de absorbancia a 340 nm es porporcional a la concentración de amoniaco en plasma.
La principal fuente de difusión de amoníaco es el tracto gastrointestinal. En condiciones normales, el amoniaco es metabolizado a urea por las enzimas del hígado. Varias enfermedades, tanto congénitas como adquiridas, causan incrementos de amoníaco (hiperamonemia). La causa principal de hiperamonemia en los bebés es la deficiencia hereditaria de enzimas del ciclo de la urea. Las enfermedades de hiperamonemia adquiridas son causadas por enfermedad hepática, insuficiencia renal, y síndorme de Reye. Un nivel alto de amoníaco es tóxico para el sistema nervioso central.
REACTIVOS
R1a Reactivo
NADPH α-cetoglutarato
0,26 mmol/L 3,88 mmol/L
R1b Tampón
Trietanolamina pH 8,6
0,15 mol/L
R2
GLDH
≥1200 U/mL
Calibrador
La concentración del estándar de amoniaco es la que viene indicada en la etiqueta del vial.
Opcional
Control de Amoniaco 4×2 mL Ref. 1002240.
PRECAUCIONES
R1b: H315-Provoca irritación cutánea. H319-Provoca irritación ocular grave. Seguir los consejos de prudencia indicados en la FDS y etiqueta del producto.
PREPARACIÓN
R1a – R1b: Reconstituir el contenido de un vial de R1a con 5 mL de R1b tampón.
R2 – CAL: Listos para su uso.
Para la utilización de este reactivo en analizadores automáticos, se debe diluir R2 con 20 mL de R1b.
CONSERVACIÓN Y ESTABILIDAD
R1 (reactivo reconstituido con el tampón) es estable 5 días a 15-25 ºC o 3 semanas a 2-8 ºC, conservado en ausencia de contaminación bacteriana. El resto de componentes del kit son estables hasta la fecha de caducidad indicada en la etiqueta del vial, cuando se mantienen los frascos bien cerrados a 2-8ºC, protegidos de la luz y se evita su contaminación. No usar reactivos fuera de la fecha indicada.
MATERIAL ADICIONAL
Espectrofotómetro o analizador para lecturas a 340 nm.
Baño termostatable a 37ºC (± 0,1ºC).
Cubetas de 1,0 cm de paso de luz.
Equipamiento habitual de laboratorio.
MUESTRAS
Plasma heparinizado o EDTA plasma.
Extraer sangre sin hemólisis y almacenar en baño de hielo. Separar el plasma o suero de los eritrocitos dentro de los 30 minutos después de la extracción. El ensayo de amoniaco se debe realizar inmediatamente. El plasma se puede conservar 2 horas a 2-8 ºC.
PROCEDIMIENTO
Condiciones del ensayo: Longitud de onda: 340 nm. Temperatura constante: 25/30/37ºC. Paso de luz de la cubeta: 1 cm. Se sugiere usar cubetas desechables en lugar de cubetas de flujo, para evitar posibles contaminaciones en analizadores manuales.
Ajustar el espectrofotómetro a cero frente a agua destilada.
Pipetear en una cubeta:
Blanco RT
Estándar
Muestra
Muestra
—
—
0,1 mL
Agua destilada
0,1 mL
—
—
Estándar
—
0,1 mL
—
Reactivo (R1)
1,0 mL
1,0 mL
1,0 mL
Mezclar, y dejar reposar durante 5 min. Leer la absorbancia inicial de la muestra y del blanco (A1).
Añadir entonces:
GLDH (R2)
0,01 mL
0,01 mL
0,01 mL
Mezclar e incubar durante 5 min. Leer la absorbancia final de la muestra y blanco (A2).
Conc. de Amoniaco = ((Amuestra – Ablanco) / (Aestandar – Ablanco)) x Conc. estándar
CONTROL DE CALIDAD
Es conveniente analizar junto con las muestras sueros control valorados: Control de Amoniaco 4×2 mL Ref.1002240. Se debe ensayar el control al menos una vez al día. Si los valores hallados se encuentran fuera del rango de tolerancia, se debe revisar el instrumento, los reactivos y la técnica.
Cada laboratorio debe disponer su propio Control de Calidad y establecer correcciones en el caso de que los controles no cumplan con las tolerancias.
Estos valores son orientativos. Es recomendable que cada laboratorio establezca sus propios valores de referencia.
CARACTERÍSTICAS DEL MÉTODO
Linealidad: El método es lineal hasta 1180 μmol/L (20 μg/mL, 2 mg/dL). Si la concentración de la muestra es superior al límite de linealidad, diluir 1/2 con ClNa 9 g/L y multiplicar el resultado final por 2. Sensibilidad: La mínima concentración detectable con un nivel de precisión aceptable, se determinó como 23,4 μmol/L (0,39 μg/mL). Precisión:
Intraserie (n=43)
Interserie (n=43)
Media (μmol/L)
66,86
162,23
403,26
66,86
162,23
403,26
SD
2,86
3,16
4,10
4,72
10,49
11,69
CV (%)
4,3
1,9
1,0
7,1
6,5
2,9
Exactitud: Los reactivos SPINREACT (y) no muestran diferencias sistemáticas significativas cuando se comparan con otros reactivos comerciales (x). Los resultados obtenidos con 56 muestras de pacientes con concentraciones de 16,57 hasta 881 μmol/L fueron los siguientes: Coeficiente de regresión (r)2: 1,0. Ecuación de la recta de regresión: y= 1,02x – 7,33. Las características del método pueden variar según el analizador utilizado.
INTERFERENCIAS
La hemólisis interfiere en el ensayo.
NOTAS
A fin de evitar contaminaciones se recomienda utilizar material de plástico de un solo uso.
SPINREACT dispone de instrucciones detalladas para la aplicación de este reactivo en distintos analizadores.
CONTIENE
R1a: 8 → 5 mL R1b: 1 x 60 mL R2: 1 x 1 mL CAL: 1 x 5.5 mL
BSIS81-E 23/01/18
Peso
0,25 kg
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