Wright 1.000 ml

Su utilización permite la tinción diferencial de las celulas sanguíneas.

52,11 

Disponible para reserva

Descripción

PRINCIPIO

La tinción de Wright es una tinción perteneciente al grupo Romanowsky. Lleva el nombre del científico que la desarrolló, James Homer Wright, que la obtuvo modificando la tinción de Romanowsky, en 1902. Los colorantes tipo Romanowsky están formados por azul de metileno y sus derivados oxidados, colorantes básicos, y el colorante ácido eosina. Los colorantes básicos se unen a los componentes ácidos de las células, ácidos nucleicos, gránulos en neutrófilos y proteínas ácidas que se tiñen de un color rojo púrpura mas o menos intenso, mientras que la eosina se une a la hemoglobina, componentes básicos de las estructuras celulares y los gránulos de los eosinófilos.
El balance entre el azul de metileno y sus derivados oxidados y entre estos y la eosina, proporciona una tonalidad más o menos azul y una mayor o menor intensidad en la coloración, que son característicos de cada tipo de colorante Giemsa, May-Grünwald o Wright.

Su utilización permite la tinción diferencial de las celulas sanguíneas.

USO PREVISTO

Familia de productos sanitarios para diagnóstico in vitro destinados a la diferenciación morfológica de núcleos y citoplasmas de plaquetas, glóbulos blancos y glóbulos rojos para estudios hematológicos e histológicos.

Son colorantes cualitativos que dan información sobre el estado fisiológico o patológico de la muestra de tejido cuando la tinción obtenida es interpretada por profesional cualificado. Para obtener un diagnóstico, los resultados se han de evaluar en el contexto de los antecedentes médicos, el estado físico y el resto de datos clínicos y de laboratorio obtenidos.

Para uso profesional de laboratorio.

COMPOSICIÓN

Eosina-azul de metileno según Wright, C.I. 45380 >2,5 g/L
Metanol >99 %

CONSERVACIÓN Y ESTABILIDAD

Los reactivos almacenados a 15-30ºC y protegidos de la luz, son estables hasta la fecha de caducidad indicada en la etiqueta. Los envases deben mantenerse siempre bien cerrados.
El paso del tiempo y temperaturas inferiores a 15ºC, pueden provocar la aparición de un ligero precipitado en algún reactivo, que no afecta a la funcionalidad del producto.
Se aconseja atemperar el reactivo a 15-30ºC, agitar y filtrar el colorante antes de su uso.

La estabilidad en uso debe ser determinada por cada usuario según su criterio.

MATERIAL NO SUMINISTRADO

Material de uso general de laboratorio.
Láminas para la extensión de la sangre.
Microscopio.

Las tinciones se pueden usar con un método de tinción manual o con equipos automáticos de tinción (consultar teñidores QCA disponibles en la web). Seguir las instrucciones de uso de los equipos automáticos suministradas por el fabricante.

PRECAUCIONES

Los reactivos se deben manipular con precaución. Las indicaciones de seguridad se encuentran en la etiqueta de los productos. Se aconseja consultar la ficha de datos de seguridad antes de la manipulación del reactivo. La eliminación de residuos debe hacerse según la normativa local vigente.

Cualquier incidente grave relacionado con el producto deberá comunicarse a QCA y a la autoridad competente del estado en el que esté establecido el usuario.

CONTROL DE CALIDAD

Se recomienda seguir las prácticas de control de calidad marcadas por los organismos internacionales y realizar tinciones de forma periódica con preparaciones de control de calidad que contengan muestras procesadas de forma similar a las muestras a evaluar.

MUESTRA

Extensiones de sangre y médula osea secadas al aire. Extensiones procedentes de diversos fluidos o tejidos corporales.
La manipulación de las muestras debe realizarse de acuerdo con los protocolos establecidos en cada laboratorio para la preparación de muestras, siguiendo el estado del arte vigente.
Se recomienda que sean finas y homogéneas para obtener una mejor fijación del colorante sin sobrecoloraciones.
Para obtener buenos resultados se aconseja realizar la tinción durante las dos horas siguientes a la preparación. Las extensiones viejas, pueden teñirse de forma irregular.
La muestra idónea es sangre capilar pero si se usa sangre venosa se aconseja utilizar EDTA como anticoagulante. El uso de la Heparina está desaconsejado.

Manipular las muestras con precaución por su capacidad potencialmente infecciosa.

PREPARACIÓN DEL REACTIVO DE TRABAJO

El reactivo está listo para su uso, para tinción manual y para su uso en el QCA Stainer.

PROCEDIMIENTO

  1. La extensión, secada al aire y sin fijar, se cubre totalmente con un volumen conocido de colorante (1 mL. aprox.) que se deja actuar durante 5 minutos.
  2. Posteriormente, se añade, gota a gota, igual volumen de tampón fosfato o agua tamponada (pH 6,8 o 7,2) soplando ligeramente con la pipeta para conseguir una mezcla homogénea.
  3. Después de 5 minutos se vierte el colorante, se lava con tampón fosfato o agua tamponada (pH 6,8 o 7,2) y se deja secar al aire.
  4. Examinar al microscopio.

Para el QCA STAINER, las distintas metódicas se encuentran en el sofware del sistema.

Cada usuario debe validar este procedimiento en su laboratorio para ajustarlo a su metódica estándar, aplicando las diversas variantes de este procedimiento, tanto manual como automático, que le permita optimizar los resultados. Se debe tener en cuenta que la intensidad de la coloración es proporcional al tiempo de tinción.

RESULTADOS

Eritrocitos: Color rosa o rosa – anaranjado.
Plaquetas: Color violeta pálido o púrpura.
Neutrófilos: Núcleo violeta oscuro. Citoplasma rosado con granulaciones rojo violeta.
Eosinófilos: Núcleo violeta. Citoplasma azul con gránulos rojos o rojo anaranjado.
Basófilos: Núcleo azul oscuro o púrpura. Gránulos púrpura casi negros.
Linfocitos: Núcleo púrpura. Citoplasma azul celeste.
Monocitos: Núcleo laxo violeta. Citoplasma azul celeste.

NOTAS

El resultado de la tinción es orientativo y debe confirmarse con pruebas adicionales adecuadas.

Los resultados de coloración indicados son orientativos ya que la intensidad y la tonalidad del color pueden ser influenciados por diferentes factores como son la fijación, el tiempo de tinción (la intensidad de la coloración es proporcional al tiempo de tinción), el pH de las soluciones usadas (en general se obtienen coloraciones más rojizas al disminuir el pH y coloraciones más azules a pH más básicos).

Para los procesos de lavado se recomienda utilizar Tampón Fosfato diluido a una concentración inferior a 10mM o agua tamponada en lugar de agua corriente. El agua corriente tiene un pH y un contenido en sales variables que, junto con concentraciones elevadas de cloro, pueden alterar los resultados de la tinción y dar lugar a resultados no consistentes.

CONTIENE

1 x 1.000 ml

PRO4-9_WRIGHT_7

Fabricado por Química Clínica Aplicada

Información adicional

Marca

Química Clínica Aplicada

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